本研究利用共表达载体pETDuet-1-SRC88-PXRLBD在Escherichiacoli中共表达SRC88(SRC-1的88个氨基酸)和PXRLBD，获得了可溶性表达的PXRLBD，并根据PXR与配体的结合特性，采用平衡透析模型和高效液相色谱法，建立了体外研究PXR和药物相互作用的新方法，为体外筛选PXR的配体药物提供了新模型。 一PXRLBD蛋白的表达1pGEX-4T-1-PXRLBDRosetta(DE3)表达菌株的构建PXRLBD片段通过BamHⅠ和XhoⅠ位点的介导插入pGEX-4T-1载体的多克隆位点。此亚克隆过程在E.coliDH5α中完成，经限制性内切酶消化。确证和DNA序列测定确证后，转化表达宿主E.coliRosetta(DE3)。 2GST-PXRLBD蛋白的表达与鉴定500mL2×YT培养基中，接种带有pGEX-4T-1-PXRLBD重组子的Rosetta(DE3)，培养至OD600为0.6左右，加IPTG(终浓度50μmol/L)，20-25℃诱导培养10h。 收集细菌，对细菌破碎液，细菌破碎液上清和细菌破碎液沉淀进行SDS-PAGE，结果表明GST-PXRLBD蛋白主要以不可溶的包涵体形式存在。 构建新的表达菌株，利用SRC88与PXRLBD的共表达实现PXRLBD的可溶性表达。 3pETDuet-1-SRC88-PXRLBDRosetta(DE3)表达菌株的构建SRC88片段通过NcoⅠ和HindⅢ位点的介导插入pETDuet-1载体的多克隆位点-1，PXRLBD片段通过NdeⅠ和XhoⅠ位点的介导插入pETDuet-1载体的多克隆位点-2(PXRLBDC-端设计His-tag以便于蛋白纯化)。此亚克隆过程在E.coliDH5α中完成，经限制性内切酶消化确证和DNA序列测定确证后，转化表达宿主E.coliRosetta(DE3)。 4PXRLBD和SRC88蛋白共表达500mL含1％葡萄糖的LB培养基中，接种带有pETDuet-1-SRC88-PXRLBD重组子的Rosetta(DE3)。培养至OD600为0.6左右，离心去除上清，用500mL含50μmol/LIPTG的2×YT培养基重悬细菌沉淀，20～25℃诱导培养10h。 5PXRLBD蛋白的纯化与鉴定表达菌液离心去除上清培养液，用1×PBS重悬细菌沉淀物。细菌经Frenchpressurecellpress破碎后，超声破碎，随即高速离心取上清用His·BindResin纯化后获得纯化液8mL。 纯化液进行SDS-PAGE，在分子量34KD附近出现明显的PXRLBD表达条带，在分子量10KD附近出现明显的SRC88表达条带。 纯化液进行Westernblot分析，一抗为人PXR101-260aa的多克隆抗体，在分子量34KD附近出现明显的PXRLBD表达条带。 纯化液经BCA蛋白浓度测定试剂盒测得纯化液蛋白浓度为(0.411±0.005)g/L。 二PXR配体筛选模型的构建将透析袋A和B放入盛有18mL含克霉唑(11.1μmol/L)的1×PBS缓冲液的试管中，透析袋C和D放入盛有18mL含地塞米松(11.1μmol/L)的1×PBS缓冲液的试管中，透析袋A和C内均加入2mL，纯化的PXRLBD溶液，透析袋B和D内均加入2mLHis·BindResinEluteBuffer作为对照组。 4℃透析，A和B透析12h达到平衡，C和D透析24h达到平衡。分别取透析袋袋内外的溶液，其中A和C溶液加蛋白酶K(终浓度10μg/mL)4℃消化1h后加甲醇(1:1)沉淀蛋白，并用高效液相色谱法进行含量分析，B和D溶液不加蛋白酶K直接加甲醇(1:1)进行含量分析。 透析平衡后，袋内游离药物浓度等于袋外游离药物浓度(即袋外药物总浓度)，因此透析袋袋内与PXRLBD结合的药物浓度等于袋内药物总浓度减去袋内游离药物浓度即袋内药物总浓度减去袋外药物总浓度。以袋内药物峰面积与袋外药物峰面积的比值A作为表征，结果表明克霉唑组A=1.382±0.086，表明袋内药物总浓度高于袋外药物浓度，即PXRLBD与克霉唑发生结合，地塞米松组A=1.004±0.012，表明袋内药物总浓度等于袋外药物浓度，即PXRLBD与地塞米松结合作用不明显，模型建立成功。 目前乙酰胆碱酯酶抑制剂已经成为治疗轻、中度阿尔茨海默氏病的主流产品。经FDA批准上市的乙酰胆碱酯酶抑制剂共5种：他克林(Tarcrine)、多奈哌齐(Donepezil，E2020)、利伐司替明(Rivastigmine)、加兰他敏(Galanthamine)和石杉碱甲(HuperzineA)，但是已有的乙酰胆碱酯酶抑制剂还存在半衰期短、较严重的外周胆碱能系统副作用等缺点，它们的临床应用受到限制。因此，寻找作用时间长、副作用小的新一代乙酰胆碱酯酶抑制剂仍是目前AD药物研究的热点。 本研究利用HEK293细胞表达重组人乙酰胆碱酯酶，通过酶动力学研究考察酶活性，建立乙酰胆碱酯酶抑制剂的筛选模型，并应用该模型测定一系列新化合物的抑制活性。 一HEK293细胞表达重组人乙酰胆碱酯酶(rhAChE)pCMV-AChE由HebrewUniversity的HermonaSoreq教授赠送。pCMV-AChE经DNA序列测定确证AChE部分与AChE结构基因序列(GenBankAccessionNo：NM_000665)一致。利用阳离子脂质体lipofectamineTM2000介导pCMV-AChE瞬时转染HEK293细胞，rhAChE分泌表达至细胞培养液中，收集细胞培养液作为酶液分析AChE活性。 二酶活性研究 采用改进的Ellman方法：反应体系中加入酶液和显色剂DTNB(5,5'-二硫代双-2-二硝基苯甲酸)，37℃孵育5min，加入底物ATCh(碘化硫代乙酰胆碱)37℃孵育一定时间，加入SDS终止反应，用酶标仪在412nm处测定吸光度(OD值)，酶反应速率v用OD/min表示。 1酶底物动力学研究反应速率对不同底物浓度作图得底物浓度曲线，通过底物浓度曲线确定反应体系中底物浓度条件。反应速率对不同酶量作图得酶量曲线，通过酶量曲线确定反应体系中酶量条件。反应速率对不同反应时间作图得反应时间曲线，通过反应时间曲线确定反应体系中孵育时间条件。 米氏常数Km测定的酶促反应条件：pH7.4，酶量4μL，底物浓度：0.075，0.1，0.125，0.175，0.25，0.3μmol/L，反应温度37℃，反应时间15min，酶反应速率v用OD/min表示，1/v对1/[S]作图获得Lineweaver-Burk图并回归分析得到Km值为151.9μmol/L。 2酶活力测定 酶活力计算公式：U(μmol/min)=V×A/(ε×L)计算，A表示吸光度随时间的变化率(1/min)，V表示反应总体积，消光系数ε=13.6L/mmol/mm，光程L=10mm。 1.6mL反应体系：pH7.4，酶量32μL，底物浓度1.25mmol/L，反应温度37℃，在412nm处测定OD值，每隔0.5min读数，连续测定3min。反应测得A=0.05934/min，rhAChE酶活力为0.698mU(μmol/min)。 3酶抑制作用动力学研究多奈哌齐是AChE的可逆性抑制剂，多奈哌齐对AChE的抑制作用为竞争性和非竞争性结合的混合类型，酶抑制常数Ki和Ki'通过二次作图法获得：不同抑制剂浓度下进行Lineweaver-Burk作图(一次作图)获得一系列曲线，一次作图各系列的斜率对[I]进行二次作图获得Ki，纵轴截距对[I]进行二次作图获得Ki'。 反应体系条件：pH7.4，酶量4μL，多奈哌齐浓度：0，2.5，5.0，10，20，40，80nmol/L，底物浓度：0.065，0.125，0.25，0.5μmol/L，反应温度37℃，反应时间15min，通过二次作图法测得Ki=16.03nmol/L，Ki’=18.36nmol/L。 三酶抑制剂筛选模型的建立和应用1多奈哌齐IC50的测定多奈哌齐是AChE的可逆性抑制剂，文献报道IC50为14.0nmol/L。选择7个浓度测定多奈哌齐对rhAChE的抑制率，以化合物摩尔浓度的负对数与酶抑制率进行线性回归求取IC50值。 反应体系条件：pH7.4，酶量4μL，多奈哌齐浓度：0，1.25，2.5，5.0，10.0，20.0，40.0，80.0nmol/L，底物浓度：0.125mmol/L，反应温度37℃，反应时间15min。结果测得多奈哌齐IC50=14.0nmol/L。 2新化合物IC50的测定新化合物来源：多奈哌齐中的二甲氧基茚酮(与AChE外周位点结合)和利伐司替明的苄基胺(与AChE中心位点结合)用氧原子连接，并且通过苄基胺结构中胺烷基的位置、种类变化，设计并合成了一系列苯氧茚酮类衍生物2a-m，3a-m。 每种化合物根据预试结果，选择6-8个浓度测定该化合物对rhAChE的抑制率，以化合物摩尔浓度的负对数与酶抑制率进行线性回归求取IC50值。
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